Prácticas hematología

29-11-19 -Objetivo En esta práctica vamos a determinar el fenotipo mas probable del grupo Rh -Materiales -->Tubos de ensayo y gradilla -->Centrifuga -->Pipeta pasteur -->Visualizaros -->Tapones para tubos -Reactivos -->Anti-D -->Anti-E -->Anti-C -->Anti-e -->Anti-c -->Kell -Muestra -->Suspensión de hematíes lavados al 5% con Sf -Procedimiento 1.Depositamos 2 o 3 gotas de antisuero en cada tubo 2.Añadimos 2 o 3 gotas de sangre en cada tubo 3.Tapamos los tubos y agitamos suavemente 4.Centrifugamos a 1000 rpm durante 1 min 5.Visualizamos si había algutinación o no -Resultados Tubo 1 (Azul)           Tubo 2 (negro) c--> +                        c--> + D--> -                        C--> + E-->-                         K--> - e-->+                         E--> + Kell--> -                   e-->  C--> -

22-11-19 -Objetivo En esta práctica vamos a aprender a realizar la determinación del grupo sanguineo ABO y el Rh -Materiales -->Lanceta -->Tarjeta -->Gradilla -->Tubos -->Algodon y alcohol -->Centrifuga -Reactivos -->Anti-A -->Anti-B -->Anti-AB -->Anti-D -->Control + --> Hematíes -Procedimiento a)Determinación en porta 1.Nos limpiamos la yema del dedo con un algodón y alcohol 2.Nos hacemos una punción capilar con una lanceta 3.Llenamos un capilar 4.Depositamos una gota de sangre en cada cuadro del porta 5.Añadimos una gota de reactivo en su cuadro correspondiente 6.Mezclamos la suspensión con una punta de pipeta 7.Observamos que muestras aglutinaron 8.El resultado fue AB- b)Determinación en tubo 1.Preparamos 6 tubos en una gradilla 2.En un tubo depositamos 0,5 ml de sangre y añadimos SSF hasta enrasar y lo tapamos 3.Lo pusimos en la centrifuga a 2500 rpm durante 5 min 4.Quitamos el sobrenadante, llenamos de nuevo c

18-10-19 -Objetivo En esta práctica vamos a realizar la tinción de Wright con extensiones de sangre capilar -Materiales -->Pipeta pasteur -->Paralelas -->Cubetas de tinción -->Microscopio -Reactivos -->Colorante Wright -Muestra -->Extensión de sangre capilar -Procedimiento 1.Colocamos la extensión  sobre las paralelas de la cubeta y la cubrimos con 1ml de colorante 2.Esperamos 5 min 3.Añadimos 1ml de solución salina 4.Esperamos 5 min 5.Observamos al microscopio

18-10-19 -Objetivo En esta práctica vamos a realizar la tinción May-Grünwald Giemsa con extensiones de sangre capilar -Materiales -->Probeta -->Pipetas pasteur -->Pipeta de 10ml -->Paralelas -->Cubeta de tincion -->Microscopio -Reactivos -->May-Grünwald -->Giemsa -Muestra -->Extensión de sangre capilar -Procedimiento 1.Realizamos una dilución del Giemsa 1/10 2.Colocamos la extensión en las paralelas de la cubeta de tinción 3.Cubrimos la extension con 2ml de May-Grünwald y esperamos 3 min 4.Vertimos el colorante y sin lavar la extensión, la cubrimos con el Giemsa diluido 5.Esperamos 15 min y lavamos 6.Observamos al microscopio

14-10-19 -Objetivo En esta práctica vamos a realizar la tinción de panóptico rápido con nuestras extensiones de sangre capilar previamente preparadas -Reactivos -->A. panóptico rápido Nº1- Disolución metanolica de colorante de triarilmetano --> B. panóptico rápido Nº2-Disolución acuosa tamponada de xanteno 1x500ml -->C. panóptico rápido Nº3-Disolución acuosa tamponada de colorantes derivados de la tiazina -Muestra -->Extensiones con sangre capilar de la práctica anterior -Procedimiento 1.Con la ayuda de unas pinzas sumergimos el porta  en la disolución Nº1 durante 5 segundos( 5 inmersiones de 1 segundo) 2.Escurrimos 3.Sumergimos de nuevo el porta en la disolución Nº2 durante 5 segundos (5 inmersiones de 1 segundo) 4.Escurrimos 5.Sumergimos de nuevo el porta en la disolución Nº3 otros 5 segundos (5 inmersiones de 1 segundo) 6.Lavamos el porta con agua del grifo y lo dejamos secar

14-10-19 -Objetivo En esta práctica vamos a realizar extensiones sanguíneas de sangre capilar para mas tarde realizar las tinciones correspondientes y su observación -Material -->Portaobjetos -->Capilares heparinizados desechables -->Lancetas -->Algodón -Reactivos -->Alcohol -Muestra -->Sangre capilar -Procedimiento 1.Nos desinfectamos el dedo con algodón y alcohol 2.Realizamos una punción capilar con la lanceta 3.Llenamos capilares heparinizados 4.Depositamos 1 gota de sangre en el extremo del porta 5.Colocamos otro porta en un angulo de 45º delante de la gota de sangre y lo dirigimos hacia esta sin cambiar el angulo 6.Esperemos a que se llene el borde por capilaridad 7.Dirigimos el porta hacia alante a un ritmo constate y firme, evitando desviaciones

7-10-19 -Objetivo En esta práctica vamos a medir la hemoglobina en sangre venosa, a través de técnicas espectrofotometricas. La hemoglobina es oxidada por la acción del ferricianuro a metahemoglobina y mediante el cianuro se convierte en cianmetahemoglobina -Material -->Esprectrofotometro -->Cubetas de 1cm de paso de luz -->Probeta -->Pipetas de 5ml y 10 ml y prepipetas -->Gradilla -->Tubos de ensayo -->Micropipeta de 10 µl y puntas -Reactivos -->Hemoglobin 50x Drabkin, compuesto de ferricianuro de potasio, cianuro de potasio y dihidrogeno fosfato de potasio -->Hemoglobin cal, que es el patrón de hemoglobina, de origen animal con concentración de 15 g/dL -Procedimiento 1.Preparamos la gradilla con 2 tubos de ensayo 2.Con una pipeta cogemos 19,6ml de agua destilada y los depositamos en una probeta 3.Añadimos 8 gotas del reactivo y lo mezclamos 4.Cogemos 2,5ml de RT y lo depositamos en un tubo. Este sera el blanco 5.Cogemos otros 2,5ml

30-9-19 -Objetivo En esta práctica vamos a determinar el valor del hematocrito, que es la relación existente entre el volumen ocupado por los hematíes y el ocupado por la sangre total, expresado en porcentaje -Materiales -->Capilares heparinizados desechables -->Plastilina -->Centrifuga de microhematocrito -->Plantilla de lectura --> Algodón -->Lancetas -->Papel -Muestra -->Sangre capilar -Procedimiento 1.Con un algodón y alcohol nos limpiamos el dedo que nos vamos a pinchar 2.Con una lanceta hacemos una punción capilar 3.Llenamos dos capilares y sellamos el extremo con plastilina 4.Los introducimos en la centrifuga a 12.000 rpm durante 5-10 min 5.Realizamos la lectura con la plantilla 6.Hacemos coincidir el inicio de la columna de hematíes con la linea 0 7.Hacemos coincidir el final de la columna de plasma con la linea 100 8.Observamos en que linea de la plantilla graduada coincide la zona de interfase entre hematíes y plasma